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正交设计法优化川木通RAPD-PCR体系研究

                作者:国锦琳,陈璐,任艳,裴瑾,万德光

【摘要】  目的确定川木通rapd-pcr反应各因素的最佳水平,最终确定rapd-pcr反应的最佳反应条件。方法采用正交设计l16(45)在4个水平上对川木通类植物进行rapd-pcr进行试验。两次结果分别用统计软件minitab进行分析。结果最终确定rapd-pcr反应的最佳反应条件为:20 μl体系,其中含1×pcr buffer, 2.5 mmol/l mgcl2,0.15 mmol/l dntps,1.0 u taq酶,0.5 μmol/l 10-mer引物,50 ng模板dna,最终确定退火温度36℃。同时发现taq酶对反应体系影响最大。结论建立了可靠的反应体系,为该类药材的分子鉴定奠定了基础。

【关键词】  正交设计; 川木通; rapd-pcr

              川木通类药材均来自于毛茛科铁线链属植物,该属植物我国共分布有108个种[1],有些铁线莲属药用植物外形极为相似,有时非花期植株难以鉴别,经过药材加工后更加难以辨别,容易在应用中造成品种混乱,影响临床用药安全与疗效。Www.11665.COM因此,在具体开发使用本属药用植物资源时,应重视和加强对其品种的鉴定,以确保资源的正确合理使用。rapd继承了pcr技术效率高,样品用量少(只需少量dna样品),灵敏度高,检测容易等优点[2],目前被广泛地应用于药用植物的分类鉴定工作。但pcr各因素水平对反应结果均有影响。目前关于川木通rapd-pcr的反应体系优化未见报道,本实验采用正交设计l16(45)在4个水平上对川木通类植物进行rapd-pcr进行试验,建立了较为可靠的反应体系。本工作为以后该类植物与药材的分子鉴定奠定了基础。

  1  材料

    本实验所使用的川木通原植物均为作者在四川各地实地采集,植物叶片采集后采用硅胶直接干燥,另外部分采集后直接编号用液氮保存,此后保存在-80℃冰箱备用,所采集植物均经过万德光教授鉴定后备用。
    
  taq聚合酶、dntp、t4连接酶、琼脂糖购自takara宝生物工程(大连)有限公司;rapd引物购自北京赛百盛公司。

  2  方法

  2.1  植物总dna的小规模提取与dna浓度的测定提取方法按干滟等[3]的方法并稍加改进。测定浓度后稀释至50 ng/μl。

  2.2  pcr反应因素水平的确定与正交表的设计[4]为了确定pcr反应中的5个因素(taq 酶、mg2+、模板dna、dntp、引物)的最佳水平,采用正交设计l16(45)在4个水平上进行实验。参加pcr反应的因素水平见表1,l16(45)设计方案见表2。表1  pcr反应的因素水平μl水平(略)表2  pcr反应的因素水平l16(45)正交实验设计μl(略)
   
  将表2的16个处理重复两次,在pcr仪上进行扩增,结果电泳检测,记录。用统计软件minitab进行分析,得到川木通rapd-pcr反应各因素的最佳水平,最后在pcr仪上,用此最佳因素水平的pcr反应体系进行梯度退火试验,筛选得到最佳退火温度。

  2.3  rapd扩增在正交结果的基础上,建立了本实验所使用的体系[5,6]。rapd扩增反应所采用的条件和体系如下:20 μl体系,其中含1×pcr buffer,2.5 mmol/l mgcl2,0.15 mmol/l dntps, 1.0utaq 酶,0.5 μmol/l10-mer引物,50ng模板dna,补ddh2o至终体积20 μl。pcr反应热循环程序如下:95℃预变性5min;36℃复性1 min;72℃延伸1.5 min;94℃变性1 min;36℃复性1min;72℃延伸1.5 min,35个循环。最后72℃延伸10 min,反应产物在4℃保存。

  2.4  电泳分析与结果统计dna扩增产物在1×tae的缓冲条件下,于1.5%琼脂糖凝胶分离,溴化乙锭染色。标准分子量为tokara提供的dl2000 marker。使用凝胶成像系统(gds8000,美国uvp)拍照分析。

  3  结果

  3.1  电泳结果评分按照表2设计的16个处理进行pcr反应后,产物进行电泳。结果见图1。
   
  根据电泳结果,按照本实验目的,即以后将要进行的遗传多样性分析的要求将16个处理从高到低依次打分,条带数量越丰富、清晰度越高、背景低的最佳产物记为16分,与此相反,最差的记为1分[7,8]。两次重复分别独立设计,从两次重复的结果看,各个处理组合的反应都具有较高的一致性。两次记分分别为1,13,14,11,10,16,15,12,2,9,8,7,6,5,4,3和1,12,14,13,10,16,11,15,2,8,9,7,5,6,4,3。

  3.2  各因素对pcr反应影响的差异分析将上述处理结果用统计软件minitab(minitab inc.)进行方差分析。结果见表3。由f值可见,taq 酶的影响最大,模板的影响最小,各因素对pcr反应的影响由大到小依次为:taq 酶、引物、mg2+、dntp、模板。由于各因素水平间的差异均达到显著水平,可以进一步进行因素内多重分析。表3  pcr反应各因素间方差分析(略)

  3.3  因素内各水平对pcr结果的影响为了分析各因素的最佳反应水平,在方差分析的基础上,继续对每个因素各个水平作多重比较,评价结果如下。
   
  taq酶的0.1与0.2,0.3与0.4水平差异不显著,其余组合差异显著。由于taq酶对结果影响最大,0.3与0.4水平达到了反应的最佳效果,且水平间差异不明显,从经济角度考虑选择了0.3水平为最佳反应水平。

    mg2+浓度对pcr结果影响明显,较为敏感,2.5水平表现最好,选择2.5水平作为本实验的最佳反应水平。

    模板dna浓度在本实验梯度内无明显变化,本实验选择1作为标准。

    dntp浓度对pcr反应结果影响具有明显的规律,在1~2水平上效果较好,其它高浓度效果较差。最终选择dntp最佳水平为2。
   
  引物浓度最佳水平最终选择1。

    退火温度进行梯度实验后最终选择36℃。

    最终,rapd-pcr反应的条件确定为:20μl体系,其中含1×pcr buffer,2.5 mmol/l mgcl2,0.15 mmol/l dntps,1.0 u taq 酶,0.5 μmol/l 10-mer引物,50ng模板dna,补ddh2o至终体积20 μl。pcr反应热循环程序如下:95℃预变性5 min;36℃复性1 min;72℃延伸1.5 min;94℃变性1 min;36℃复性1 min;72℃延伸1.5 min,35个循环。最后72℃延伸10 min,反应产物在4℃保存。

  4  讨论

    本实验借助正交设计优化pcr反应体系,使结果较以往的单因素实验更加科学、完善和简便,为以后的分子鉴定工作的标准化、高重复性奠定了基础。本方法在其它pcr类体系的设计优化上有一定的指导作用和示范意义。

【参考文献】
  1]中国科学院中国植物志编辑委员会.中国植物志(28卷)[m].北京:科学出版社,1980:177.

  [2]黎裕,贾继增,王天宇. 分子标记的种类及其发展[j]. 生物技术通报,1999,4:19.

  [3]干滟,曾凡亚,赵云,等.油菜单株总dna的快速制备[j].四川大学学报(自然科学版),1999,36(5):936.

  [4]谢运海,夏德安,姜静,等.利用正交设计优化水曲柳issr-pcr反应体系[j].分子植物育种,2005,3(3):445.

  [5]bautista r, crespillo r, francisco mc ,et al. identification of olive-tree cultivars with scar markers[j]. euphytica,2002, 129: 33.

  [6]jia jh, wang p, jin dm, et al. the application of rapd markers in diversity detection and variety identification of porphyra[j]. acta bot sin,2000,42: 403.

  [7]mariniello l, sommella mg, sorrentino a et al. identification of prunus armeniaca cultivars by rapd and scar markers[j]. biotechnol lett,2002,24: 749.

  [8]nybom h and bartish iv. effects of life history traits and sampling strategies on genetic diversity estimates obtained with rapd markers in plants[j]. perspect plant ecol evol syst,2000,3: 93.

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