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促红细胞生成素对缺血/再灌注心室肌细胞收缩功能和钙瞬变的影响

               作者:魏来,易定华,张海锋,程亮,谢念林 

【摘要】  目的: 探讨人重组促红细胞生成素(rhuepo)对大鼠缺血/再灌注(i/r)心肌细胞的保护作用. 方法 : 常规酶解法获得成年大鼠心室肌细胞,用氰化钠/乳酸钠灌注造成细胞化学缺氧以模拟缺血. 缺血15 min后以台氏液或台氏液加rhuepo复氧模拟再灌注,用可视化动缘探测系统同步检测rhuepo对单个i/r心室肌细胞收缩力和钙瞬变的 影响 . 结果: 发现rhuepo使再灌注后心室肌细胞肌小节最大收缩幅度、最大缩短速率、最大复长速率以及ca2+荧光比率增大,使ca2+达峰值时程、舒张期ca2+减少50%时程减少(p<0.05, n=10,来自8个心脏). 结论:rhuepo可促进i/r心室肌细胞收缩及钙瞬变的恢复而发挥其保护作用.

【关键词】  重组促红细胞生成素;缺血;再灌注损伤;心肌细胞;收缩功能;钙瞬变

  【abstract】 aim: to determine the protective effect of recombinant human erythropoietin (rhuepo) on ischemia/reperfused cardiomyocytes. methods: ventricular myocytes were enzymatically isolated from adult sd rats. chemical anoxic solution including sodium cyamide/sodium lactate was used to simulate myocardial ischemia. after 15 min of ischemia, myocytes were reperfused with tyrodes solution with or without rhuepo for 30 min. contribution of rhuepo to systolic/diastolic function and intracellular calcium transient in isolated i/r ventricular myocytes was assessed by videobased motion edgedetection system. results: reperfusion with rhuepo increased peak twitch amplitude, maximal velocity of shortening, maximal velocity of relengthening of myocytes shorterning and fluorescence ratio ca2+, and decreased time to peak ca2+, time to 50% diastolic ca2+ compared with those in cells reperfused with vehicle (n=10 myocytes from 8 hearts, p<0.05). conclusion: treatment with rhuepo during reperfusion facilitates the recovery of systolic/diastolic function and calcium transient in simulated i/r cardiomyocytes.

  【keywords】 recombinant erythropoietin; ischemia; reperfusion injury;cardiomyocyte;contraction;calcium transient

  0  引言
   
  近年 研究 发现,人重组促红细胞生成素(recombinant human erythropoietin,rhuepo)预处理能显著改善离体心肌缺血再灌注后血流动力学和心肌酶谱[1]. 由于可视化动缘探测系统因其操作简便、直观,可实时同步记录心肌细胞机械功能变化和细胞内钙瞬变等,已成为心肌细胞生 理学 研究领域 应用 较广泛的技术之一[2]. 本研究利用心肌细胞模拟i/r模型,采用可视化动缘探测系统,同步检测rhuepo对离体缺血/再灌注(i/r)大鼠心肌细胞收缩、舒张功能和钙瞬变的影响,以探讨rhuepo对大鼠i/r心肌细胞的保护作用.

  1  材料和方法

  1.1  材料  成年sd大鼠12只,体质量220~260 g,雌雄不拘, 正常饮食(第四军医大学实验动物心);rhuepo(沈阳三生制药有限公司);胶原酶ⅱ(collagenaseⅱ,美国worthington biochemical公司);牛血清白蛋白(美国sigma chemical公司); fura2/am(美国alexis公司); 双激发荧光光电倍增系统可视化动缘探测系统(美国ionoptix公司).

  1.2  方法

  1.2.1  心肌细胞分离  采用戊巴比妥钠(30 mg/kg,ip)麻醉并肝素化(1000 u/kg,iv)大鼠后,开胸并立即取出心脏,保留足够长的主动脉,以便于插入和固定于灌流系统心脏套管. 速置于预冷的无钙台氏液(mmol/l) (nacl 143,kcl 5.4,mgcl2 0.5,nah2po4 0.3,hepes 5.0,葡萄糖5.0, ph 7.2, 4℃)中. 将langendorff灌流套管套入主动脉(不能套入过长,以免套管逾主动脉瓣插入左心室)并固定,尽快开始灌流. 先以预充混合气体的无钙台氏液(ph 7.2,以950 ml/l o2+50 ml/l co2混合气体饱和)灌流心脏2~3 min,使其停跳;再换含0.4 g/l胶原酶ⅱ(270 u/mg)和0.7 g/l牛血清白蛋白的无钙酶液灌流20~25 min. 待心脏变松软、灌流液流出速度明显加快后再用无钙台氏液灌流冲洗残留酶液约5 min. 上述灌流过程中,若心脏一直呈粉红色,表明心肌细胞存活. 将心室组织剪下,置于含20 g/l bsa的kb液(mmol/l) (左旋谷酰胺70,kcl 25,牛磺酸20,kh2po4 10,mgcl2 3.0,egta 0.5,hepes 10,葡萄糖10,ph 7.2)中. 将心室组织撕碎,以粗头吸管轻轻反复吹打后,经200目细胞滤网过滤细胞悬液. 室温静置10 min使存活(viable)心肌细胞沉降,换含20 g/l bsa的新鲜kb液. 静置40 min后,以0.1 mol/l cacl2逐步复钙,使细胞悬液ca2+终浓度为1.8 mmol/l,得到钙耐受心室肌细胞,室温下将其保存在含l.8 mmol/l cacl2的台氏液中. 分离所得杆状心肌细胞>80%,钙耐受存活心肌细胞>60%[3].

  1.2.2  建立i/r模型  根据seki等[4]的方法, 采用氰化钠乳酸钠化学缺氧法模拟缺血. 台氏液灌流心肌细胞约5 min, 并给予电场刺激(0.5 hz,5 ms), 待细胞收缩稳定后,以化学缺氧液(nacl 121, kcl 5.4, mgcl2 0.5, nah2po4 0.3, cacl2 1.8, nacn 2.0 和乳酸钠20 mmol/l, ph 7.2~7.4)进行灌流. 模拟缺血灌流15 min 后, 对照组以含氧台氏液再灌注, rhuepo组在台氏液再灌注的同时给予rhuepo.

  1.2.3  心肌细胞收缩检测  心室肌细胞收缩采用ionoptix 单细胞动缘探测系统同步检测心肌细胞收缩及钙瞬变. 将心肌细胞置于倒置显微镜(olympus)载物台上的细胞灌流小室内, 以含氧台氏液灌流(1 ml/min, 25℃). 给予0.5 hz, 5 ms波宽的电场刺激, 场刺激由灌流小室底部两侧镶嵌的铂电极产生, 细胞收缩影像通过40×物镜传输到myocam照相系统并呈现在监视器上. 心肌细胞肌小节收缩幅度和收缩/舒张速度等指标由 计算 机自动实时采集并记录. 心室肌细胞选取标准: ① 细胞呈长杆状,长约为宽的6~8倍;② 细胞边缘折光性好,横纹清晰,细胞膜上无空泡且对台盼蓝拒染;③ 无自发收缩,而能随电刺激稳定地收缩;④ 细胞收缩方向与细胞长轴一致;⑤ 细胞进人灌流小室后,立即下沉并与小室底部很快粘附,灌流液在常规速度不能将其冲走;⑥ 给药前细胞收缩幅度恒定至少5 min以上[3].

  1.2.4  心肌细胞钙瞬变检测  将fura2/am(0.5 mol/l)与心肌细胞避光孵育30 min(25℃), 采用双激发荧光光电倍增系统检测荧光信号. 75 w紫外氙光灯发射的光通过360 nm或380 nm的滤光片到达0.5  hz刺激下收缩的心肌细胞, 细胞内与游离ca2+结合的荧光物质被激发, 其发射光在510 nm波长处被检测并通过光电倍增管记录. 细胞相继迅速被360 nm和380 nm激发光照射并交替扫描, 细胞内游离ca2+浓度的改变由上述两种波长荧光强度的比率所反映.
   
  统计学处理:实验数据以x±s表示, 两组间均数比较采用组间t检验, 多组间均数比较采用方差 分析 (anova), 用origin 统计软件进行统计分析, p<0.05为差异具有统计学意义.

  2  结果

  2.1  心肌细胞模拟i/r模型  从12只大鼠心脏中的8个心脏分离出的心肌细胞较为理想, 并从中随机选取了10个形态、功能良好的心室肌细胞,建立心肌细胞的模拟i/r模型, 记录心肌细胞收缩变化时程(图1). 心肌细胞在电场刺激下以含氧台氏液灌流5 min, 待稳定后换以化学缺氧液灌流15 min模拟缺血, 肌小节收缩幅度逐渐减弱至缺血前的(30±8)% (n=10, p<0.05), 换以正常含氧台氏液再灌注, 心肌收缩很快恢复, 继续灌流细胞收缩逐渐稳定至缺血前的(85±9)%.

  ap<0.05 vs缺血前(n=10).

  图1  模拟i/r过程中心肌细胞收缩幅度的变化(略)

  2.2  rhuepo对模拟i/r心肌细胞收缩的 影响   再灌注时,给予rhuepo的i/r心肌细胞收缩速度和舒张速度明显加快,收缩幅度增加. 主要检测指标中最大收缩幅度(peak twitch amplitude,pta)、最大缩短速率(maximal velocity of shortening,+dl/dt)、最大复长速率(maximal velocity of relengthening,-dl/dt)均提高(表1, 图2).

  2.3  rhuepo对模拟i/r心肌细胞钙瞬变的影响  再灌注后5 min,rhuepo增强心肌细胞收缩的同时, 心肌细胞钙瞬变也增强. 主要检测指标中δca2+荧光比率(fluorescence ratio, fr)提高,fura2荧光强度变化(ffi峰值ffi基线值,δffi) 没有显著差异,ca2+达峰值时程(time to peak ca2+,ttpca)、舒张期ca2+减少50%时程(time to 50% diastolic ca2+,t50dca) 减少(表2, 图3).

  表1  rhuepo对i/r心肌细胞肌小节收缩/舒张速度影响(略)

  ap<0.05,cp<0.05 vs对照组.
  
  图2  正常组, i/r组, i/r+rhuepo组心肌细胞收缩幅度的变化(略)

  表2  rhuepo对i/r心肌细胞ca2+瞬变指标的影响(略)

  ap<0.05,cp<0.05 vs对照.

  图3  正常组, i/r组, i/r+rhuepo组心肌细胞钙瞬变的变化(略)

  3  讨论
   
  本实验我们利用酶解法分离成年大鼠心肌细胞并给予rhuepo体外干预,避免了多种在体因素对rhuepo心肌保护效应的影响. 通过可视化动缘探测系统,对经rhuepo处理的i/r大鼠心肌细胞和未经rhuepo处理的i/r大鼠心肌细胞收缩力进行比较, 发现再灌注时给予rhuepo的i/r心肌细胞比对照组心肌细胞收缩速度和舒张速度明显加快, 收缩幅度增加, 表明rhuepo处理可显著促进i/r心肌细胞收缩功能的恢复.
   
  钙瞬变减小和衰减减慢,是心肌收缩能力减退的主要原因. 为探讨rhuepo处理对i/r心肌细胞内钙瞬变的影响,我们在检测收缩力的同时,同步检测了心肌细胞内钙的变化. 结果表明,i/r心肌细胞舒张期钙明显增加,而收缩期细胞内钙无改变,钙瞬变幅度减小,舒张期钙衰减时程延长,钙瞬变的改变与心肌细胞收缩力减弱一致,但收缩期钙达峰时间并无明显差别. 而rhuepo使i/r心肌细胞ca2+达峰值时程、舒张期ca2+减少50%所需时间减少, 但对fura2荧光强度变化(ffi峰值-ffi基线值,δffi)的影响没有显著差异. 实验实时同步检测了心肌细胞收缩力与钙瞬变,直接反映二者的关系.  有 研究 [1]推测epo对心肌i/r损伤保护作用的机制为:epo与心肌细胞上epo受体(epor)结合,通过多个信号转导途径,涉及蛋白酪氨酸激酶2(janus tyrosine kinase 2,jak2)信号转导和转录激活因子5、磷脂酰肌醇3激酶(pi3k)、丝裂原活化蛋白激酶(mapks)和核转录因子κb(nfκb)等[5],发挥抗凋亡、稳定细胞超微结构的作用,对抗心肌i/r损伤. 目前 ,epo在心血管外科主要 应用 于自身输血和改善患者术前贫血[6].
   
  综上所述,本研究发现epo可减轻心肌i/r损伤,促进缺血心肌收缩功能的恢复,提示rhuepo可望成为心血管外科的心肌保护药物.

【 参考 文献 】
    [1] 仇玉明,王 征,董念国,等. 人重组促红细胞生成素预处理对i/r心肌血流动力学、心肌酶谱和超微结构的影响[j].

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